УДК  617.713-007.64-085.831.04-076-018

http://doi.org/10.31288/oftalmolzh202022429

 

Структурні зміни рогівки, виявлені за допомогою конфокальної мікроскопії у пацієнтів з кератоконусом після прискореного кросслінкінгу  

Л. Ф. Тройченко 1, канд. мед. наук; К. В. Середа 1, канд. мед. наук; Г. І. Дрожжина 1, д-р мед. наук, проф.;  О. М. Іванова 1, канд. мед. наук; Н. В. Медведовська 2, д-р мед. наук, проф.

1 ДУ «Інститут очних хвороб і тканинної терапії ім. В.П. Філатова НАМН України;  Одеса (Україна)

2 Національна медична академія післядипломної освіти імені П. Л. Шупика  МОЗ України; Київ (Україна)

E-mail:  cornea@te.net.ua

КАК ЦИТИРОВАТЬ: Тройченко Л. Ф. Структурні зміни рогівки, виявлені за допомогою конфокальної мікроскопії, у пацієнтів з кератоконусом після прискореного кросслінкінгу / Л. Ф. Тройченко, Е. В. Середа, Г. І. Дрожжина, О. М. Іванова, Н. В. Медведовська // Офтальмол. журн. – 2020. – № 2. – С. 24-29. http://doi.org/10.31288/oftalmolzh202022429

 

Актуальність. Біомікроскопічні зміни рогівки у пацієнтів, хворих на кератоконус, після кросслінкінгу (CLX) можливо виявити за допомогою конфокальної мікроскопії (КМ). В літературі зустрічаються поодинокі повідомлення про морфологічні зміни рогівки після CLX. 

Метою нашого дослідження було виявлення структурних змін рогівки за допомогою КМ після прискореного CLX у хворих на кератоконус. 

Матеріал та методи. В нашому дослідженні на 167 очах хворих на кератоконус після прискореного CLX виявленні структурні зміни рогівки за допомогою КМ в терміни спостереження до 12 міс після операції. Процедура прискоренного CXL виконувалася за допомогою приладу UV-X ™ 2000 з потужністю випромінювання 9 mW/см². Конфокальна біомикроскопія проводилась на приладі «Confoscan 4» (Nidek, Японія).

Результати. Процедура акселерованого (10 хвилин) CLX при прогресуючому кератоконусі 2-3 стадій являється безпечною та приводить до стабілізації кератоконуса в терміни спостереження 12 місяців після операції. Через 3 місяці після процедури прискореного CLX зафіксовано активне відновлення кератоцитів в глибоких і поверхневих шарах строми з розсмоктуванням вогнищ фіброзу. Відновлення нормальної архітектоніки рогівки починається через 6 міс після прискореного кросслінкінгу та репополюзація кератоцитів завершається через 12 місяців за даними КМ.

Ключові слова: кератоконус, конфокальна мікроскопія, кросслінкінг

 

Література

1.Аветисов С.Э. Офтальмология. Национальное руководство. – М.: ГЭОТАР-МЕДИА, 2008.

2.Бикбов М. М. Метод перекрестного связывания коллагена роговицы при кератоконусе. Обзор литературы / М. М . Бикбов [и др.] // Офтальмология. – 2014. – Т. 11, № 3. – С. 13–18.

3.Бирич Т.А. Результаты лечения больных с кератоконусом / Т.А. Бирич, А.Ю. Чекина, Н.И. Аксенова // Офтальмология Белоруси. – 2010. – №1(4).

4.Ивановская Е. В., Вит В. В., Головченко В. Г. Иммунологический статус больных с различными стадиями кератоконуса и кератоглобусом // Офтальмол. журнал. – 2000. – №5. – С. 40-44.

5.Севастьянов Е.Н. Кератоконус (этиология, патогенез, медикаментозное лечение): учебное пособие / Е.Н. Севастьянов, Е.Н. Горскова, В.Ф. Экгард. – Челябинск: УГМАДО, 2005. – 32 с.

6.Солодкова, Е.Г. Современные подходы в лечении прогрессирующей кератэктазии / Е.Г. Солодкова [и др.] // Практическая медицина. – 2012. – №4. – С. 75-79.

7.Adel Alhayek. Corneal collagen crosslinking in keratoconus and other eye disease /Adel Alhayek, Pei-Rong Lu // Int J Ophthalmol. – 2015. – Vol. 8(2). – P.407–418.

8.Brookes N.H., Loh I-P. et al. Involvement of corneal nerves in the progression of keratoconus // Experimental Eye Research. – 2003. – Vol.77. – P.515–24. 

9.Cavanagh H.D., Petroll W.M., Alizadeh H. et al. Clinical and diagnostic use of in vivo confocal microscopy in patients with corneal disease // Ophthalmology. –1993. – Vol.100. – P.1444–54.

10.Chew S.J., Beuerman R.W., Assouline M. et al. Early diagnosis of infectious keratitis with in vivo real time confocal microscopy // CLAO Journal. – 1992. – Vol.18. – P.197–201.

11.Chiou AG.-Y., Beuerman R.W., Kaufman S.C. et al. Confocal microscopy in cornea lattice corneal dystrophy // Graefes Arch.Clin. Ophtalmol. – 1999. –Vol.237. – P.697-701.

12.Chiou A.G., Kaufman S.C., Beuerman R.W. et al. Confocal microscopy in posterior polymorphous corneal dystrophy // Ophthalmologica. – 1999b. – Vol.213. – P.211–13.

13.Ciancaglini M., Carpineto P., Doronzo E. et al. Morphological evaluation of Schnyder s central crystalline dystrophy by confocal microscopy before and after phototherapeutic keratectomy // J. Cataract. Refract. Surg. – 2001. – Vol.27. – P.1892-1895.

14.Croghale N.S. Epidemiology of keratoconus // Indian J. Ophthalmol. – 2013. – Vol.61, No. 8. – P. 382-383.

15.Hollingsworth J.G., Efron N., Tullo A.B. In vivo corneal confocal microscopy in keratoconus // Ophthalmic Physiol Opt. – 2005. – Vol.25. – P.254–60.

16.Knappe S., Stachs O., Zhivov A., Hovakimyan M., Guthoff R. Results of confocal microscopy examinations after collagen cross-linking with riboflavin and UVA light in patients with progressive keratoconus // Ophthalmologica. – 2011. – Vol.225. – P.95–104.

17.Ku J.Y., Grupcheva C.N., McGhee C.N. Microstructual analysis of Salzmann's nodular degeneration by in vivo confocal microscopy // Clin. Exp. Ophtalmol. – 2002. – Vol.30. – P.367-368.

18.Kymionis GD. Herpetic keratitis with iritis after corneal crosslinking with riboflavin and ultraviolet A for keratoconus/ G.D. Kymionis, D.M. Portaliou, D.I .Bouzoukis, L.H. Suh, A.I. Pallikaris, M .Markomanolakis, S.H. Yoo // J Cataract and Refract Surg. – 2007. – Vol.33. – №11. – P.1982–1984.

19.Kohlhaas M. Biomechanical evidence of the distribution of cross-links in corneas treated with riboflavin and ultraviolet A light / M.Kohlhaas, E.Spoerl, T.Schilde, G. et al. // J Cataract Refract Surg. – 2006. – Vol.32. – №2. – P.279–283.

20.Macsai MS, Varley GA, Krachmer JH. Development of keratoconus after contact lens wear: Patient characteristic / M.S.Macsai, G.A. Varley, J.H. Krachmer // Arch Ophthalmol. – 1990. – Vol.108. – №26. – P.534–538.

21.Mazzotta C. Treatment of progressive keratoconus by riboflavin-UVA-induced cross-linking of corneal collagen; ultrastructural analysis by Heidelberg Retinal Tomograph II in vivo confocal microscopy in humans / C. Mazzotta, A. Balestrazzi, C.Traversi, et al. // Cornea. – 2007. – №26. – P.390-397.

22.Mazzotta C, Traversi C, Baiocchi S, Caporossi O, Bovone C, Sparano MC, et al. Corneal healing after riboflavin ultraviolet-A collagen cross-linking determined by confocal laser scanning microscopy in vivo: Early and late modifications // Am J Ophthalmol. – 2008. – Vol.146. – P.527–33

23.Mazzotta C., Hafezi F., Kymionis G., et al. In Vivo Confocal Microscopy after Corneal Collagen Crosslinking // Ocul Surf. – 2015. – Oct;13(4). – P.298-314. 

24.Meek K. M. Changes in collagen orientation and dis-tribution in keratoconus corneas / K. M. Meek, S. J. Tuft, Y. Huang et al. // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. – 2005. – Vol. 46. – №6. – P.1948-1956.

25.Nowak D.M. The genetics of keratoconus / D/M/ Nowak, M.Gajecka // middle East Afr.J.Ophthalmol. – 2001. – Vol.18. - №1. – P.2-6.

26.Patel S.V., McLaren J.W., Hodge D.O. et al. Normal human keratocyte density and corneal thickness measurement by using contact microscopy in vivo // Invest. Ophthal.Vis. Sci. – 2001. – Vol.42. – P.333-339.

27.Patel D.V., McGhee C.N. Mapping the corneal sub-basal nerve plexus in keratoconus by in vivo laser scanning confocal microscopy // IOVS. – 2006. – Vol.47. – P.1348–51.

28.Rabinowitz Y.S. Keratoconus // Surv Ophthalmol. – 1998. – Vol.42. – №4. – P.297–319.

29.Rebecca McQuaid. The theory and art of corneal cross-linking / Rebecca McQuaid, MSc, Arthur B Cummings, Michael Mrochen // Indian J Ophthalmol. – 2013. – Aug; 61(8). – P. 416–419. 

30.Rosenberg M.E., Tervo T.M., Muller L.J. et al. In vivo confocal microscopy after herpes keratitis // Cornea. – 2002. – Vol.21. – P.265–9.

31.Rosenberg M.E., Tervo T.M., Immonen I.J. et al. Corneal structure and sensitivity in type 1 diabetes mellitus // Invest Ophthalmol Vis Sci. – 2000. – Vol.41. – P.2915–21. 

32.Rothstein A., Auran J., Wittpenn J. et al. Confocal microscopy in Meretoja syndrome // Cornea. – 2002. – Vol.21. – P.364-367.

33.Spoerl E. Induction of cross-links in corneal tissue / Spoerl E., Huhle M., Seiler T. // Exp. Eye Res. – 1998. – Vol.66. – P.97-103.

34.Spoerl E. Techniques for stiffening the cornea / Spoerl E, Seiler T J.// Refract. Surg. – 1999. – Vol.15. – P. 711-713.

35.Spoerl E. Safety of UVA – riboflavin cross – linking of the cornea. / E. Spoerl, M. Mrochen, D. Sliney, S. Trokel, T. Seiler // Cornea. – 2007. – № 26. – P. 385-389.

36.Sporl E. Increased rigidity of the cornea caused by intrastromal crosslinking / E. Sporl, M. Huhle, M. Kasper, T. Seiler // Ophthalmologe. – 1997. – Vol.94(12). – P.902–906.

37.Simo Mannion L., Tromans C., O’Donnell C. An evaluation of corneal nerve morphology and function in moderate keratoconus // Cont Lens Anterior Eye. –2005. – Vol.28. – P.185–92.

38.Somodi S., Hahnel C., Slowik C. et al. Confocal in vivo microscopy and confocal laser-scanning fluorescence microscopy in keratoconus // Ger. J. Ophthalmol. – 1997. – Vol.5. – P.518–525.

39.Tsubota K. Corneal epithelium in keratoconus / K.Tsubota, Y. Mashima, H. Murata, N. Sato, T. Ogata // Cornea. – 1995. – Vol.14. – P.77–83.

40.Touboul D., Efron N., Smadja D. et al. Corneal confocal microscopy following conventional, transepithelial, and accelerated corneal collagen cross-linking procedures for keratoconus // J Refract Surg. – 2012. – Vol.28. – P.769–76.

41.Vinciguerra P., Torres I., Camesasca F.I. Applications of confocal microscopy in refractive surgery // J. Refract. Surg. – 2002. – Vol.18. – P.378-381.

42.Vinciguerra P., Albè E., Trazza S., Rosetta P., Vinciguerra R., Seiler T. et al. Refractive, topographic, tomographic, and aberrometric analysis of keratoconic eyes undergoing corneal cross-linkin // Ophthalmology. – 2009. – Vol.116. – P.369–78.

43.Wasilewski D., Mello G.H., Moreira H. Impact of collagen crosslinking on corneal sensitivity in keratoconus patients // Cornea. – 2013. – Vol.32. – P.899–902.

44.Wollensak G. Riboflavin ultraviolet – A – induced collagen crosslinking for the treatment of keratoconus / G. Wollensak, E. Spoerl, T. Seiler // Am J Ophthalmol. – 2003. – Vol.135. – P. 620 627.

45.Wollensak G. Stress-strain measurements of human and porcine corneas after riboflavinultraviolet – A-induced cross-linking / G. Wollensak, E. Spoerl, T. Seiler // J Cataract Refract Surg. – 2003 – Vol.29. – № 9. – P.1780–17.

46.Werner L.P., Issid K., WernerL., et al. Salzmann's corneal degeneration associated with epithelial basement membrane dystrophy // Cornea. – 2000. – Vol.19. – P.121-123.

47.Winchester K., Mathers W.D., Sutphin J.E. et al. Diagnosis of Acanthamoeba keratitis in vivo with confocal microscopy // Cornea. – 1995. – Vol.14. – P.10–17.

48.Zare M.A., Mazloumi M., Farajipour H. et al. Effects of corneal collagen crosslinking on confocal microscopic findings and tear indices in patients with progressive keratoconus // Int J Prev Med. – 2016. – Dec 23(7). – P.132.

 

Автори засвідчують про відсутність конфлікту інтересів, які б могли вплинути  на їх думку стосовно предмету чи матеріалів, описаних та обговорених в даному рукопису. 

Поступила  18.02.2020