Офтальмол. журн. — 2019. — № 1. — С. 9-16.

УДК  617.761+616.833.13:616.523-07(048.8),

http://doi.org/10.31288/oftalmolzh20191916

Нарушения функций глазодвигательных (III и VI) черепных нервов, ассоциированные с активной герпесвирусной инфекцией

И. Г. Васильева, канд. биол. наук;  В. Н. Жданова, канд. мед. наук; Н. Г. Чопик, канд. биол. наук; Т. А. Макарова, мл. науч. сотр.; Е. С. Галанта, науч. сотр;  О. И. Цюбко, науч. сотр.

ГУ ”Институт нейрохирургии им. акад. А. П. Ромоданова НАМН Украины“,  Киев (Украина)

E-mail:  vigvasileva@gmail.com

Глазодвигательные нарушения (ГДН) имеют важное клинико-социальное значение. Существует группа больных с ГДН неустановленной этиологии.

Цель работы. Исследование присутствия ДНК вирусов герпеса в венозной крови пациентов с ГДН, обусловленными поражением III, VI черепных нервов (ЧН).

Материал и методы. Обследовано 35 больных с ГДН невыясненной этиологии. Анализ присутствия ДНК HSV1/2, CMV, EBV, HHV6, HHV7, VZV, HHV8 в крови проводили методом полимеразной цепной реакции.

Результаты. Из 35 обследованных пациентов с ГДН, обусловленными поражением III и VI ЧН, у 16 (45,7%) в крови выявлен HHV7, у 5 (14,3%) обнаружен EBV, у 2 (5,7%) пациентов – HHV6, у 1 пациента найден вирус HSV1/2 и еще у 1 – CMV. У 8 (22,8%) пациентов обнаружено по два вируса: EBV, HHV7 у 6 пациентов; EBV, HHV6 у 1 пациента и HHV7, HHV6 у 1 пациента; у 2 (5,7%) пациентов выявлены три вируса – EBV, HHV7, HHV6.

Заключение. При ГДН с неустановленной этиологией рекомендуется исследование венозной крови на присутствие вирусов герпеса.

Ключевые слова: глазодвигательные нарушения, герпесвирусы

Литература

  1. Кочина М. Л., Демин Ю. А., Ковтун Н. М., Каплин И. В. Особенности интерференционных картин глаз при горизонтальном косоглазии // Український журн. медицини, біології та спорту. –2017. – №2(4). – С.75-81.
  2. Ковтун Н. М. Интерференционные картины роговицы глаза при разных состояниях глазодвигательных мышц // Український журн. медицини, біології та спорту. – 2017. – № 6 (8). – С.81-86.
  3. Jacobson D. M., Trobe J. D. The emerging role of magnetic resonance angiography in the management of patients with third cranial nerve palsy // Am J Ophthalmol. – 1999. – Jul; 128 (1). – Р.94-6.
  4. Slepowa O. S. PCR study of the human herpes virus type 6 and other viruses of the herpes group in eye diseases / O. S. Slepowa, E. V. Svetlova, L. A. Kovaleva et al. //   Vopr Virusol. –2015. – Vol.60, №6. – Р.45-48.
  5. Zhu L. Ocular herpes: the pathophysiology, management and treatment of herpetic eye diseases / L. Zhu, Н. Zhu // Virol Sin. – 2014. – Vol. 29, №6. – Р.327-342 
  6. Sugita S.Virological analysis in patients with human herpes virus 6-associated ocular inflammatory disorders / S. Sugita, N. Shimizu, K. Watanabe et al. //  Invest Ophthalmol Vis Sci. – 2012. – Vol.53, № 8. – Р.4692-4698. 
  7. Gonzalez-Gonzalez L. A. Clinical features and presentation of infectious scleritis from herpes viruses: a report of 35 cases / L. A. Gonzalez-Gonzalez, N. Molina-Prat,  P. Doctor et al. // Ophthalmology. – 2012. – Vol. 119, №7. – Р.1460-1464.   
  8. Dyson H. Spread of herpes simplex virus within ocular nerves of the mouse: demonstration of viral antigen in whole mounts of eye tissue / H. Dyson, C. Shimeld, T. G. Hill et al. //  J Gen Virol. – 1987. – Vol.68, №12. – Р.2989-2995.
  9. El-Habashi N. An ocular infection model using suckling hamsters inoculated with equineherpesvirus 9 (EHV-9): kinetics of the virus and time-course pathogenesis of EHV-9-induced encephalitis via the eyes / N. El-Habashi, Y. Kato, E. El-Nahass Fukushi et al. //  Vet Pathol. – 2013. – Vol. 50, №1. – Р.56-64. 
  10. Higaki S. Virological and molecular biological evidence supporting herpes simplex virus type 1 corneal latency / S. Higaki, M. Fukuda, Y. Shimomura // Ophthalmol. Jpn. – 2015. – Vol.59, №2. – Р.131-134. 
  11. Borkar D. S. Association between atopy and herpetic eye disease: results from the pacific ocular inflammation study / D. S. Borkar, J. A. Gonzales,V. M. Tham et al. // Ophthalmol. JAMA. – 2014. – Vol.132, №3. – Р. 326-331. 
  12. Jester J. V. Confocal Microscopic Analysis of a Rabbit Eye Model of High-Incidence Recurrent Herpes Stromal Keratitis / J. V. Jester, N. Morishige, L. Ben Mohamed et al. //  Cornea. – 2016. – Vol.35, №1. – Р.81-88. 
  13. Tesini B. L. Clinical impact of primary infection with roseoloviruses / B. L. Tesini, L. G. Epstein, M. T. Caserta // Curr Opin Virol. – 2014. – № 9. – Р.91-96. 
  14. Miyazaki Y. Monitoring of human herpesviruses-6 and -7 DNA in saliva samples during the acute and convalescent phases of exanthem subitum / Y. Miyazaki, H. Namba, S. Torigoe et al.//  J Med Virol. – 2017. – Vol. 89, №4. – Р.696-702. 
  15. Roush K. S. Prevalence and cellular reservoir of latent human herpesvirus 6 in tonsillar lymphoid tissue / K. S.  Roush, R. K. Domiati-Saad, L. R. Margraf et al. // Am J Clin Pathol. – 2001. – Vol. 116, №5. – Р.648–654. 
  16. Krug L.T. Roseolovirus molecular biology: recent advances / L. T. Krug, P. E. Pellett // Curr Opin Virol. – 2014. – №9. – Р.170-177. 
  17. Harberts E. Human herpesvirus-6 entry into the central nervous system through the olfactory pathway / E. Harberts, K.Yao, J. E. Wohler et al. // Proc Natl Acad Sci. USA. –2011. – Vol. 108, №33. – Р.13734-13739. 
  18. Kawamura Y. Pathogenic Role of Human Herpesvirus 6B Infection in Mesial Temporal Lobe Epilepsy/ Y. Kawamura, A. Nakayama, T. J. Kato et al. // Infect Dis. – 2015. – Vo1.212, №7. – Р.1014-1021. 
  19. Shanehsazzadeh M. Epidemiology of herpes human virus 6 and 7 infections in salivary gland neoplasms in isfahan, iran / M. Shanehsazzadeh, J. S. Rad, A. Pourazar et al. // Med Arch. – 2014. – Vol. 68, № 4. – Р.276-278. 
  20. Szewc A. M. Acute Liver Failure in an Adolescent Male Induced by Human Herpesvirus 6 (HHV-6): A Case Report With Literature Review. DE(3) / A. M.  Szewc, S. Taylor, G. D. Cage et al. // Lab Med. – 2018. – Vol.49,  №2. – Р.165-174. 
  21. Caruso A. HHV-6 infects human aortic and heart microvascular endothelial cells, increasing their ability to secrete proinflammatory chemokines / A.Caruso, A. Rotola, M. Comar, F. Favilli et al. // J Med Virol. – 2002. – Vol.67, №4. – Р.528–533.
  22. Kondo K. Latent human herpesvirus 6 infection of human monocytes / macrophages / K. Kondo, T. Kondo, T. Okuno  et al. // J Gen Virol. – 1991. – Vol. 72,  №6. – Р.1401–1408. 
  23. Chi J. Human herpesvirus 6 latent infection in patients with glioma / J. Chi B.Gu, C. Zhang et al. // J Infect Dis. – 2012. – Vol.206,  №9. – Р.1394-1398. 
  24. Luppi M. Human herpesvirus 6 latently infects early bone marrow progenitors in vivo / M. Luppi, P. Barozzi, C. Morris et al. // J Virol. – 1999. – Vol.73, №1. – Р.754–759.
  25. Andre-Garnier E. Reactivation of human herpesvirus 6 during ex vivo expansion of circulating CD34 haematopoietic stem cells / E. Andre-Garnier, N. Milpied D. Boutolleau et al. // J Gen Virol. – 2004. – Vol.85, №1. – Р.3333-3336. 
  26. Marseglia L. Human herpesviruses-6 and -7 encephalitis in immunocompetent infants: are they really so uncommon / L. Marseglia, S. Manti, D Angelo et al. // J Biol Regul Homeost Agents. – 2016. – Vol.30,  №4. – Р.1131-1136.
  27. Riva N. Асute human herpes virus 7 (HHV-7) encephalitis in an immunocompetent adult patient: a case report and review of literature / N. Riva, I. Franconi, M. Meschiari et al. //  Infection. – 2017. – Vol.45, №3. – Р. 385-388. 
  28. Velázquez Benito A. Multiple involvement of cranial nerves by an uncommon pathogen: humanherpesvirus type 7/A. Velázquez Benito, S. Santos Lasaosa, A.Viloria Alebesque et al. //  Med Clin (Barc). – 2011. – Vol. 137, №14. – Р.667-668. 
  29. Killick J. Complement as a regulator of adaptive immunity / J. Killick, G. Morisse, D. Sieger et al. // Semin Immunopathol. – 2018. – Vol.40, № 1. – Р.37-48. 
  30. Takemoto M. Human herpesvirus 7 infection increases the expression levels of CD46 and CD59 in target cells / M. Takemoto, K. Yamanishi, Y. Mori // J Gen Virol. – 2007. – Vol. 88, №5. – Р.1415-1422.
  31. Boeckh M. Immunosuppressive effects of beta-herpesviruses / M. Boeckh, W. G. Nichols // Herpes. – 2003. – Vol.10, №1. – Р.12-16.
  32. Nastke M. D. Human CD4_ T cell response to human herpesvirus 6 / M. D. Nastke,  A. Becerra, L. Yin et al. // J Virol. – 2012. – Vol. 86, №9. – Р.4776–4792. 
  33. Gerdemann U. Immunotherapeutic strategies to prevent and treat human herpesvirus 6 reactivation after allogeneic stem cell transplantation / U. Gerdemann, L. Keukens, J. Keirnan  et al. // Blood. – 2013. – Vol.121, №1. – Р.207–218. 
  34. Martin L. K.  Specific CD8 T cells recognize human herpesvirus 6B/ L. K. Martin,  A. Schub,  S. Dillinger  et al. // Eur J Immunol. – 2012. – Vol.42, № 11. – Р.2901–2912.
  35. Yamanishi K., Mori Y., Pellett P. E. (2013). Human herpesviruses 6 and 7. – In Knipe D. M., Howley P. M., Cohen J. I., Griffin D. E., Lamb R. A., Martin M. A., Racaniello V. R., Roizman B. (ed). Fields virology, 6th ed., vol 2. – Lippincott Williams & Wilkins, Philadelphia, PA. – Р.2058–2079.
  36. Mori Y.  Recent topics related to human herpesvirus 6 cell tropism / Y. Mori // Cell Microbiol. – 2009. – Vol.11, №7. – Р.1001-1006. 
  37. Tanaka Y. Herpesvirus 6 glycoproteins B (gB), gH, gL, and gQ are necessary and sufficient for cell-to-cell fusion / Y. Tanaka, T. Suenaga, J. Matsumoto et al. // Virol. – 2013. – Vol.87, № 19. – Р.10900-10903. 
  38. Secchiero P. Human Herpesvirus 7 induces CD4(+) T-cell death by two distinct mechanisms:necrotic lysis in productively infected cells and apoptosis in uninfected or nonproductively infected cells / P. Secchiero, L. Flamand, D. Gibellini et al. // Blood. – 1997. – Vol. 90, №11. – Р.4502-4512
  39. Cassiani-Ingoni R. CD46 on glial cells can function as a receptor for viral glycoprotein-mediated cell-cell fusion / R. Cassiani-Ingoni, H. L. Greenstone D. Donati et al. // Glia. – 2005. – Vol.52, №3. – Р.252-8.
  40. He J. Infection of primary human fetal astrocytes by human herpesvirus 6 / J. He, M. McCarthy, Y. Zhou et al. // J Virol. – 1996. – Vol.70, № 2. – Р.1296-1300.
  41. Klein G. Interaction of Epstein-Barr virus (EBV) with human B-lymphocytes / G. Klein, E. Klein, E. Kashuba // Biochem. Biophys. Res. Commun. – 2010. – Р.67–73. 
  42. Chesnokova L. S. Viral Entry / L. S. Chesnokova, R. Jiang, L. M. Hutt-Fletcher et al. // Curr Top Microbiol Immunol. – 2015. – Vol. 391. – Р.221-235. 
  43. Hannan J. P. The Structure-Function Relationships of Complement Receptor Type 2 (CR2; CD21) / J. P. Hannan // Curr Protein Pept Sci. – 2016. – Vol.17, №5. – Р.463-87.
  44. Ogembo J. G. Human complement receptor type 1/CD35 is an Epstein-Barr virus receptor / J. G. Ogembo, L. Kannan,  I.  Ghiran et al. // Cell Rep. – 2013. – Vol.3. – Р.371–385. 
  45. Gurbuz F. Epstein-barr virus encephalitis in infancy / F. Gurbuz, B. Gurbuz, A. Çayir et al. // West Indian Med J. – 2014. – Vol.63, №2. – Р.206-207. 
  46. Laurence M. Epstein-Barr virus and multiple sclerosis: Updating Pender's hypothesis / M. Laurence, J. Benito-León // Mult Scler Relat Disord. – 2017. – Vol.16. – Р.8-14. 
  47. Ito H. Antineuronal antibodies in acute cerebellar ataxia following Epstein-Barr virus infection / H. Ito, S. Sayama, S. Irie et al. // Neurology. – 1994. – Vol.44, №8. – Р.1506-1507.
  48. Jenson H. B. Epstein-Barr virus /  H. B. Jenson //  Pediatr Rev. – 2011. – Vol. 32. –Р.375–383.
  49. Tsao S. W. The role of Epstein-Barr virus in epithelial malignancies / S. W. Tsao, C. M. Tsang, K. F. To et al. // J Pathol. – 2015. – Vol. 235, №2. – Р.323-33. 
  50. Van Samkar A. Acute cerebellitis in adults: a case report and review of the literature / A. Van Samkar, M. N. F. Poulsen, H. P. Bienfait et al. // BMC Res Notes. – 2017. –Vol.10, №1. – Р.610. 
  51. Hussain  R. S. Ataxia and Encephalitis in a Young Adult with EBV Mononucleosis: A Case Report / R. S. Hussain, N. A. Hussain // Case Rep Neurol Med. – 2013. – 516325. doi: 10.1155/2013/516325
  52. Jha H. C. Gammaherpesvirus Infection of Human Neuronal Cells / H. C. Jha, D. Mehta, J. Lu et al. // MBio. – 2015. – Vol.6, №6. – e01844-15. 
  53. Kano K. Biopsy-proven case of Epstein-Barr virus (EBV)-associated vasculitis of the central nervous system/K. Kano, T.Katayama, S.Takeguchi et al. // Neuropathology. – 2017. – Vol.37, №3. – Р.259-264. 
  54. Mazur-Melewska K. Neurologic Complications Caused by Epstein-Barr Virus in Pediatric Patients / K. Mazur-Melewska, I. Breńska, K. Jończyk-Potoczna  et al. // J Child Neurol. – 2016. – Vol.31, №6. – Р.700-708. 
  55. Grassin M. Bilateral facial nerve palsy associated with Epstein-Barr virus infection in a 3-year-old boy / M. Grassin, A. Rolland, N. Leboucq et al. // Arch Pediatr. – 2017. – Vol.24, №6. – Р.564-567. 
  56. Papageorgiou E. Fourth cranial nerve palsy and bilateral acute retinal necrosis following human herpesvirus 6 infection of the central nervous system / E. Papageorgiou, S. Ch'ng, A. Kulkarni et al. // Ocul Immunol Inflamm. – 2014. – Vol. 22, №3. – Р.228-232. 

Поступила 12.11.2018