Полный текст Pdf 

УДК 617.735-002-02:616.379-008.64-085

http://doi.org/10.31288/oftalmolzh201046064

СТАБИЛЬНОСТЬ ЛИЗОСОМАЛЬНЫХ МЕМБРАН СЕТЧАТКИ БЕЛЫХ КРЫС ПРИ СТРЕПТ030Т0ЦИН0В0М ДИАБЕТЕ В УСЛОВИЯХ МЕДИКАМЕНТОЗНОГО ВОЗДЕЙСТВИЯ АЦЕТИЛЦИСТЕИНОМ, ФЛАВОНОИДОМ И ТАУРИНОМ)

Т. И. Гладуш, канд. мед. наук, Е. И. Байдан, ст. лаборант

ГУ Институт глазных болезней и тканевой терапии им. акад. В. П. Филатова НАМH Украины,

г. Одесса

Вивчався вплив ацетилцистеіна і таурина на стан лізосомальних мембран в сітківці білих щурів з експериментальним стрептозотоциновим діабетом. Розвиток експериментального діабету супроводжувався змінами у лабільності лізосомальних мембран сітківки, які приводили до збільшення в цитозолі вільної форми маркерного фермента кислої фосфатази та зменшення зв'язаної форми його у лізосомах. Застосування ацетилцистеіна і біофлавоноіда сприяло підвищенню стабільності лізосомальних мембран — рівень вільної форми кислої фосфатази в цитозолі клітинних структур сітківки знижувався.

Ключевые слова: стрептозотоциновый диабет, лизосомальные мембраны сетчатки, лечение, эксперимент

Ключові слова: стрептозотоциновий діабет, лізосомальні мембрани сітківки, лікування, експеримент

 

ЛИТЕРАТУРА

1.Великий М. М., Бурда В. А., Биронт и др. Влияние никотинамида на активность ферментов антиоксидантной защиты при экспериментальном диабете // Укр. Биохим. журн. — 1996. — Т. 68. — № 2. — С. 109-114.

2.Кравчук Е. А. Роль свободнорадикального окисления в патогенезе заболеваний глаз // Вестник офтальмологии. — 2004. — № 5. — С. 48-51.

3.Леус Н. Ф. метаболические механизмы развития и перспективы медикаментозного лечения диабетической ретинопатии // Офтальмол. журн. — 2003. — № 5. — с. 75- 80.

4.Михейцева И. Н., Кашинцева Л. Т. Оксидантный и антиоксидантный статус больных с диабетическими изменениями глазного дна и его коррекция препаратом липохромин // Офтальмол. журн. — 2001. — № 2. —С. 29-32.

5.Наследов А. SPSS компьютерный анализ данных в психологии и социальных науках. // Спб.: Питер, 2005. — 416 с.

6.Новые методы биохимического анализа. // Изд. Ленинградского универ. — 1991. — 395 с.

7.Недосугова Л. В., Ланкин В. З., Балаболкин М. И. Взаимосвязь между компенсацией углеводного обмена и выраженностью проявлений окислительного стресса при сахарном диабете 2 типа // Бюллетень экспер. биол. и мед. — 2003. — Т. 136. — № 8. — С. 152- 155.

8.Олейник Т. В. Исследование глутатиона в сетчатке крыс со стрептозотоцин-индуцированным диабетом // Офтальмол. журн. — 2004. — № 5. — С. 65- 69.

9.Павлюченко К. П., Олейник Т. В. Окислительное повреждение пигментного эпителия сетчатки при моделировании стрептозотоцинового диабета // Офтальм. журн. — 2005. — № 3. — С. 47- 49.

10.Павлюченко К. П., Олейник Т. В. Исследование продуктов перекисного окисления липидов при развитии стрептозотоцинового диабета // Вестник неотложной и восстановительной медицины. — 2005. — Т. 6. —№ 3. — С. 510-513.

11.Полторак В. В., Блох К. О., Малашенко А. М. Экспериментальное моделирование сахарного диабета для изучения специфического эффекта новых антидиабетических веществ / Методические рекомендации. — Харьков. — 1991. — 19 с.

12.Трженицкий С. Д., Красько М. П. Состояние гормонального, углеводного, липидного обменов и свободно-радикального окисления у животных с экспериментальным диабетом // Экспер и клин. физиология и биохимия. — 2001. — № 2. — С. 83-88.

13.Aksoy N., Vural H., Sabuncu T. Effects of melatonin on oxidative-antioxidative status of tissues in streptozotocin-induced diabetic rats / Cell Biochem Funct. — 2003. — V. 21 (2). — P. 121-125.

14.Aliciguzel Y., Ozen I., Asian M. Activities of xanthine oxidoreductase and antioxidant enzymes in different tissues of diabetic rats / J Lab Clin Med. — 2003. — V. 142 (3). —P. 172-177.

15.Bains J. S., Shaw C. A., Neurodegenerative disorders in humans: the role of glutathione in oxidative stress-mediated neuronal death / Brain Res. — 1997. — V. 25 (3). —P. 335-358.

16.Bayness J. W. Role of oxidative stress in development of complications in diabetes / Diabetes. — 1991. — V. 40. —P. 405-412.

17.Bergmeyer H. U. Methoden der enzymatischen Analyse. — Herausgegeben von H. U. Bergmeyer. — Berlin. — 1986. — S. 2254 — 2265.

18.Cai J., Nelson K. C., Wu M. Oxidative damage and protection of the RPE / Prog Retin Eye Res. — 2000. — V. 19 (2). — P. 205-221.

19.Dierkx N., Horvath G., van Gils C. Oxidative stress status in patients with diabetes mellitus: relationship to diet / Eur J Clin Nutr. — 2003. — V. 57 (8). — P. 999- 1008.

20.Feillet-Coudry C, Rock E., Coudry C. Lipid peroxidation and antioxidant status in experimental diabetes / Clin Chim Acta. — 1999. — V. 284. — P. 31 — 43.

21.Hammes H. P., Du X., Edelstein D. Benfotiamine blocks three major pathways of hyperglycemic damage and prevents experimental diabetic retinopathy // Nat. Med. — 2003. — № 9. — P. 249- 299.

22.Martin-Gallan P., Carrascova A., Gussinye M. Biomarkers of diabetes-associated oxidative stress and antioxidant status in young diabetic patients with or without subclinical complications / Free Radic Biol Med. — 2003. — V. 34 (12). — P. 1563- 1574.

23.Merzouk S., Hichami A., Madani S. Antioxidant status and levels of different vitamins determined by high performance liquid chromatography in diabetic subjects with multiple complications / Gen Physiol Biophys. — 2003. — V. 22. — № 1. — P. 15-27.

24.Nishikawa T., Edelstein D., Du X. L. Normalizing mito-chondrial superoxide production blocks three pathways of hyperglycaemic damage. // Nature. — 2000. — Vol. 404. —P. 787 — 790.

25.Reyk D. M., Gillies M. C., Davies M. J. The retina: oxi-dative stress and diabetes / Redox Rep. — 2003. — V. 8 (4). — P. 187-192.

26.Scutt F., Bergmenn M., Holz F. G. Isolation of intact lysosomes from human RPE cells and effects of A2-E on the intergrity of the branes / Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. — 2002. — V. 240. — P. 983-988.

27.Speicher M. A., Danis R. P., Criswell M. Pharmacologic therapy for diabetic retinopathy / Expert Opion Emerg Drugs. — 2003. — V. 8 (1). — P. 239- 250.

28.Timmers M. M., Dratz E. A., Grip W. J. A new isolation procedure for retinal pigment epithelium / IOVS. — 1984. — V. 9. — P. 113.

29.Ulusu N. N., Sahilli M., Avci A. Pentose phosphate path-way, glutathione-dependent enzymes and antioxidant de¬fense during oxidative stress in diabetic rodent brain and peripheral organs: effects of stobadine and vitamin E / Neurochem Res. — 2003. — V. 28 (6). — P. 815-823.

30.Yildimir O., Buyukbingol Z. Effects ofsupplementation with a combination of cobalt and ascorbic acid on antioxidant enzymes and lipid peroxidation levels in streptozotocin-diabetic rat liver / Biol Trace Elem Res. — 2002. — V. 90 (1-3). — P. 143- 154.

31.Zhou J., Yang J., Yue L. Research on nitric oxide, oxidative and lipid peroxidative parameters in blood ofdiabetic patients / Wei Sheng Yan Jiu. — 1999. — V. 28 (5). — P. 271- 273.